O que é a coloração simples? Principais recursos
O coloração simples É um procedimento rápido e simples de coloração, no qual um único corante é usado, por isso é chamado de simples. É usado principalmente para determinar a morfologia e organização das células presentes em uma amostra.
Naturalmente, as células não têm cor, por isso é necessário torná-las visíveis de alguma forma quando são observadas no microscópio.
É importante enfatizar que os corantes usados na coloração simples devem ser básicos com uma carga positiva (catiônica), de modo que possam se ligar espontaneamente à parede celular e ao citoplasma.
Essas estruturas celulares são carregadas negativamente. É por isso que o corante, positivamente carregado, é atraído para as células e se liga a elas espontaneamente. Assim, todas as células presentes em uma amostra são rapidamente coloridas.
Corantes utilizados em coloração simples
Existem vários corantes básicos que podem ser usados no laboratório de microbiologia. Os mais utilizados são:
- Azul de metileno.
- violeta de cristal.
- verde malaquita.
- fucsina básica.
Todos esses corantes funcionam bem em bactérias porque possuem íons coloridos (cationicos) carregados positivamente (cromóforos).
Os tempos de coloração para a maioria destes corantes são relativamente curtos. Eles geralmente variam de 30 segundos a 2 minutos, dependendo da afinidade do corante.
É importante ter em mente que, antes de tingir uma amostra por simples coloração, ela deve ser estendida e fixada na lâmina de vidro (lâmina); A amostra estendida e fixa é chamada de esfregaço.
Os 6 passos para realizar uma simples coloração
Passo 1
Coloque o slide em um rack de coloração e aplique o corante desejado. Deixe agir o tempo correspondente.
Normalmente, a coloração simples leva alguns segundos ou alguns minutos, dependendo do corante usado.
Observação
Nesta etapa é importante não exceder o tempo recomendado para o corante utilizado, uma vez que os cristais poderiam se formar na folha, produzindo o que é conhecido como "artefatos" que distorcem a morfologia das células.
Passo 2
Lave com cuidado o esfregaço da lâmina com água destilada de uma garrafa, ou também com água da torneira que flui lentamente, até o escoamento se tornar transparente. Isso geralmente leva de 5 a 10 segundos.
Observação
Não aplique o fluxo de água diretamente no esfregaço, para evitar que a força do mesmo danifique a amostra.
Se você não tiver água destilada, poderá usar água da torneira sem problemas, pois isso não afetará o resultado da coloração.
Passo 3
Seque o slide com toalhas de papel absorvente em uma direção e sem esfregar. Certifique-se de que a parte inferior do slide esteja limpa.
Passo 4
Observe o esfregaço manchado no microscópio. Comece com os objetivos mais distantes para localizar corretamente a área que você deseja observar com mais detalhes. Mudança de objetivo para chegar mais perto e mais perto da amostra.
Observação
Para o uso da lente com a maior ampliação (normalmente 100X) deve-se usar óleo de imersão, já que ajuda a luz a penetrar melhor e a imagem mais nítida. Não é necessário usar uma lamela.
Passo 5
Por fim, descarte todas as amostras em um contêiner apropriado que esteja adequadamente rotulado como "risco biológico".
Referências
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- Harisha, S. (2006). Uma introdução à biotecnologia prática (1st). Mídia de firewall.
- Moyes, R. B., Reynolds, J. e Breakwell, D. P. (2009). Coloração preliminar de bactérias: Manchas simples. Protocolos atuais em microbiologia(SUPPL 15), 1-5.
- Pommerville, J. (2013). Fundamentos de Microbiologia do Laboratório Alcamo (10th). Jones & Bartlett Learning.
- Prescott, H. (2002). Exercícios Laboratoriais em Microbiologia (5 th). As empresas McGraw-Hill.
- Sumbali, G. & Mehrotra, R. (2009). Princípios da Microbiologia (1st). Tata McGraw-Hill Educação.